In vitro establishment and initial growth of Physalis angulata (Solanaceae)

Authors

  • Lenaldo Muniz de Oliveira
  • Anderson de Carvalho Silva
  • Danilo Marcelo Santos Pereira
  • Angélica Maria Lucchese
  • José Raniere Ferreira de Santana

DOI:

https://doi.org/10.13102/scb323

Abstract

The aim of this study was to establish Physalis angulata in vitro and identify the best culture medium for germination and initial growth of the species. We assessed the germination, in vitro establishment and initial growth of its seedlings in different culture media (MS, WPM and ½MS). First, we evaluated the percentage, average time and speed index of germination 15 days after seed inoculation. Then, we evaluated the average number of roots and leaves, length of shoots and roots, and dry mass of shoots, leaves and roots of seedlings 15, 30 and 45 days after seed inoculation. Germination started four days after inoculation and the choice of culture media did not affect germination. However, significant differences among culture media were found for most growth parameters evaluated. The culture media WPM and ½MS provide better initial growth of seedlings and these are recommended for the other stages of micropropagation of this species.

Downloads

Download data is not yet available.

References

Bellintani, C.M.; Lima, C.C.; Brito, L.A.; Santana, F.R.J. & Dornelles, C.L.A. 2007. Estabelecimento in vitro de Orthophytum mucugense e Neoregelia mucugensis. bromélias endêmicas da Chapada Diamantina. Bahia - Brasil. Revista Brasileira de Biociências 5: 1101-1103.

Bertozzo, F. & Machado, I.S. 2010. Meios de cultura no desenvolvimento de ápices caulinares de mamoneira (Ricinus communis L.) in vitro. Ciência e Agrotecnologia 34(6): 1477–1482. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542010000600018

BRASIL 1992. Regras para Análise de Sementes. Ministério da Agricultura, Secretaria Nacional de Defesa da Agropecuária, Brasilia.

Caldas, L.S.; Haridasan, P. & Ferreira, M.E. 1998. Meios Nutritivos. In: A.C. Torres, L.S. Caldas & J.A. Buso (Orgs), Cultura de Tecidos e Transformação Genética de Plantas. EMBRAPA-SPI/EMBRAPA-CNPH, Brasilia, p. 87–132.

Chaves, A.C.; Schuch, M.W. & Erig, A.C. 2005. Estabelecimento e multiplicação in vitro de Physalis peruviana L. Ciência e Agrotecnologia 29(6): 1281–1287. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542005000600024

Drapeau, D.; Blanch, H.W. & Wilke, C.R. 1986. Growth kinetics of Dioscorea deltoidea and Catharanthus roseus in batch culture. Bioengineering and Biotechnology 28: 1555–1563. http://dx.doi.org/10.1002/bit.260281014

Ferreira, D. F. 2011. Sisvar: a computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia 35(6): 1039–1042.

Gonzales, O.T.; Torres, J.M.C.; Cano, C.I.M.; Arias, M.L. & Arboleda, A.A.N. 2008. Caracterización morfológica de cuarenta y seis accesiones de Uchuva (Physalis peruviana L.), em Antioquia (Colombia). Revista Brasileira de Fruticultura 30(3): 708–715. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-29452008000300025

Labouriau, L.G. 1983. A Germinação das Sementes. OEA, Washington.

Lédo, A.S.; Seca, G.S.V.; Barboza, S.B.S.C. & Silva, J.J.F. 2007. Crescimento inicial de mangabeira (Hancornia speciosa Gomes) em diferentes meios de germinação in vitro. Ciência e Agrotecnologia. 31(4): 989–993. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542007000400007

Leitzke, L.N.; Damiani, C.R. & Schuch, M.W. 2009. Meio de cultura, concentração de AIB e tempo de cultivo no enraizamento in vitro de amoreira-preta e framboeseira. Revista Brasileira de Fruticultura 31(2): 582–587. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-29452009000200037

Lloyd, G. & Mccown, B. 1981. Commercially feasible micropropagation of montain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture. Combined Proceedings of the International Plant Propagator's Society 30: 421–327.

Lopes, D.C.D.X.P.; Freitas, Z.M.F.; Santos, E.P. & Tomassini, T.C.B. 2006. Atividade antimicrobiana e fototóxica de extratos de frutos e raízes de Physalis angulata L. Revista Brasileira de Farmacognosia 16(2): 206–210. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-695X2006000200013

Maguire, J.D. 1962. Speed of germination aid in selection and evaluation of seedling emergence and vigor. Crop Science 2(1): 176–177. http://dx.doi.org/10.2135/cropsci1962.0011183X000200020033x

Monteiro, A.C.B.A.; Higashi, E.N.; Gonçalves, A.N. & Rodriguez, A.P.M. 2000. A novel approach for the definition of the inorganic medium components for micropropagation of yellow passion fruit (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Deg.). In vitro Cellular and Developmental Biology-plant 36(6): 527–531. http://dx.doi.org/10.1007/s11627-000-0094-3

Murashige, T. & Skoog, F.A. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture. Phisiologia Plantarum 15: 473–497. http://dx.doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Rodrigues, F.A.; Penoni E.S.; Soares, J.D.R. & Pasqual, M. 2013. Diferentes concentrações de sais do meio MS e BAP na mutiplicação in vitro de Physalis peruviana L. Bioscience Journal 29(1): 77–82.

Santos-Serejo, J.A.; Junghans, T.G.; Soares, T.L. & Silva, K.M. 2006. Meios nutritivos para micropropagação de plantas. In: A.S. Sousa & T.G. Junghans (eds.), Introdução à Micropropagação de Plantas. Embrapa Mandioca e Fruticultura Tropical, Cruz das Almas, p. 79–98.

Soares, E.L.C.; Vendruscollo, G.S.; Vignoli-Silva, M.; Thode, V.A.; Silva, J.G. & Mentz, L.A. 2009. O gênero Physalis L. (Solanaceae) no Rio Grande do Sul, Brasil. Pesquisas, Botânica 60: 323–340.

Souza, N.K.R. & Amorim, S.M.C. 2009. Crescimento e desenvolvimento de Physalis angulata Lineu submetida ao déficit hídrico. Revista Acadêmica 7(1): 65–72.

Souza, M.O.; Souza, C.L.M. & Pelacani, C.R. 2011. Germinação de sementes osmocondicionadas e não-osmocondicionadas e crescimento inicial de Physallis angulata L. (Solanaceae) em ambientes salinos. Acta Botanica Brasilica 25(1): 105–112. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-33062011000100013

Tamaki, V.; Mercier, H. & Nievola, C.C. 2007. Cultivo in vitro de clones de Ananas comosus (L.) Merril cultivar 'Smooth Cayenne' em diferentes concentrações de macronutrientes. Hoehnea 34: 69–73. http://dx.doi.org/10.1590/S2236-89062007000100004

Tomassini, T.C.B.; Barbi, N.S.; Ribeiro, I.M. & Xavier, D.C.D. 2000. Gênero Physalis - uma revisão sobre vitaesteróides. Química Nova 23(1): 47–57. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-40422000000100011

Tonietto, S.M.; Perini, C.B. & Tonietto, A. 2008. Concentrações e composição do meio de Murashige & Skoog na micropropagacão da Menta. Plant Cell Culture Micropropagation 4(1): 42–47.

Vasconcellos, A.G.; Lage, C.L.S. & Esquibel, M.A. 2003. In vitro flowering of Physalis angulata L. (Solanaceae). Revista Brasileira de Plantas Medicinais 6(1): 23–27.

Villa, F.; Pasqual, M.; Assis, F.A.; Assis, G.A. & Zárraga, D.Z.A. 2009. Micropropagação de duas espécies frutíferas, em meio de cultura DSD1, modificado com fontes de boro e zinco. Ciência e Agrotecnologia 33(2): 468–472. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542009000200016

Zhang, W.; Curtin, C.; Kikuchi, M. & Franco, C. 2002. Integration of jasmonic acid and light irradiation for enhancement of anthocyanin biosynthesis in Vitis vinifera suspension cultures. Plant Science 162: 459–468. http://dx.doi.org/10.1016/S0168-9452(01)00586-6

Published

2013-12-30

How to Cite

de Oliveira, L. M., Silva, A. de C., Pereira, D. M. S., Lucchese, A. M., & de Santana, J. R. F. (2013). In vitro establishment and initial growth of Physalis angulata (Solanaceae). SITIENTIBUS série Ciências Biológicas, 13. https://doi.org/10.13102/scb323

Issue

Section

Artigos