Influência da polaridade do explante na resposta morfogênica de Annona squamosa L. cultivada in vitro

Autores

  • José Raniere Ferreira de Santana Departamento de Ciências Biológicas, Universidade Estadual de Feira de Santana, Cx. P. 252-294, 44036-900, Feira de Santana, Bahia, Brasil.
  • Renato Paiva Departamento de Biologia, Universidade Federal de Lavras, Cx. P. 37, 37200-000, Lavras, Minas Gerais, Brasil.
  • Lenaldo Muniz de Oliveira Departamento de Ciências Biológicas, Universidade Estadual de Feira de Santana, Cx. P. 252-294, 44036-900, Feira de Santana, Bahia, Brasil.
  • Alone Lima-Brito Departamento de Ciências Biológicas, Universidade Estadual de Feira de Santana, Cx. P. 252-294, 44036-900, Feira de Santana, Bahia, Brasil.
  • Flávia Dionísio Pereira Instituto Federal Goiano, Rodovia Sul Goiana, Km 01, Zona Rural, 75900-000, Rio Verde, Goiás, Brasil.
  • Cristina Ferreira Nepomuceno Departamento de Ciências Biológicas, Universidade Estadual de Feira de Santana, Cx. P. 252-294, 44036-900, Feira de Santana, Bahia, Brasil.

DOI:

https://doi.org/10.13102/scb8019

Resumo

O trabalho teve como objetivo avaliar a influência do tipo e da polaridade do explante na resposta morfogênica in vitro, utilizando três tipos de vedação. Segmentos de hipocótilo e epicótilo de Annona squamosa L. foram inoculados em tubos de ensaio contendo meio de cultura WPM acrescido de 8,87 ìM de BAP nas orientações horizontal, vertical ou vertical invertida (somente hipocótilo). Os tubos foram fechados com tampa plástica (vedada ou não com película de PVC) ou tampão de algodão e mantidos em sala de crescimento sob radiação fotossintética ativa de 45-56 ìmol.m-2.s-1 à 25 ± 3oC. Os resultados mostram que a polaridade do explante afeta a organogênese e que o maior número de brotações (8,3 por explante) foi obtido quando os segmentos de hipocótilo foram inoculados na orientação vertical mantendo sua polaridade natural. O tipo de tampa usada para fechar os tubos de ensaio não afetou a capacidade organogênica dos explantes. A utilização de segmentos de hipocótilo e epicótilo, inoculados verticalmente, constitui o método mais eficiente para a obtenção de brotações em A. squamosa.

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Referências

Araújo JF. 1991. Tratamentos para acelerar e uniformizar a germinação de sementes de pinha (Annona squamosa L.). Cruz das Almas. Dissertação de Mestrado. Escola de Agronomia da Universidade Federal da Bahia.

Bejoy M & M Hariharan. 1992. In vitro plantlet differentiation in Annona muricata. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 31(3): 245-247.

Bellintani MC. 2006. Estudo da propagação in vitro e ex vitro de Neoregelia mucugensis Leme, Orthophytum mucugense Wand. e Conceição e O. albopictum Philcox espécies de Bromeliaceae endêmicas da Bahia. Tese de Doutorado (Universidade Estadual de Feira de Santana), Feira de Santana.

Byeong WY, RH Zimmerman, I Forhhan & C Kwang. 1987. Influence of photoperiod, apical meristem and explant orientation on axillary shoot proliferation of apple cultivars. Journal of American Society for Horticultural Science 112(3): 588-592.

Carvalho JFRP de, CR de Carvalho & WC Otoni. 2005. Regeneração in vitro de urucum (Bixa orellana L.) a partir de diferentes tipos de explantes. Revista Árvore 29(6): 887-895.

Chen C & J Chen. 2002. Measurement of gas exchange rates in plant tissue culture vassels. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 71: 103-109.

Cui ML, K Takayanagi & T Handa. 2004. High frequency of shoot regeneration from hypocotyls and stem segments of Antirrhinum majus (Snapdragon). Plant Cell, Tissue and Organ Culture 78: 51-53.

Cutter EG. 1986. Anatomia vegetal: células e tecidos. São Paulo: Roca.

Debenath SC. 2003. Improved shoot organogenesis from hypocotyls segments of lingonberry (Vaccinium vitis-idaea L.). In Vitro Cellular Development Biology – Plant 39: 490-495.

Erig PR, G Ferreira & E Moro. 2001. Crescimento inicial de plantas de fruta-do-conde sob efeito do ácido giberélico. In: Congresso Brasileiro de Fisiologia Vegetal, 8. Anais... Ilhéus, p. 31.

Erig AC & MW Schuch. 2002. Multiplicação in vitro de porta-enxerto de macieira cv. Marubakaido: efeito da orientação do explante no meio de cultura. Revista Brasileira de Fruticultura 24(2): 293-295.

Ferreira DF. 2003. Sisvar – Software Versão 4.3. DEX/UFLA. Lavras, Minas Gerais.

George EF. 1993. Plant propagation by tissue culture. Part 1. The technology. 2a ed. Edington: Exergetics.

Gunkel JE, WR Sharp, BW Williams, WC West & WO Drinkwater. 1972. Root and shoot initiation in sweet potato explants as related to polarity and nutrient media variations. Botanical Gazzetti 133(3): 254-262.

Hartmann HT, DE Kester, FT Davies JR & RL Geneve. 1997. Plant propagation: principles and practices. 6a ed. New Jersey: Prentice-Hall.

Jordan M. 1988. Multiple shoot formation and rhyzogenesis from cherimola (Annona cherimola L.) hypocotyls and petiole explants. Gartenbauwissenschaft 53(5): 234-237.

Koné M, EM Patat-Ochatt, C Conreux, Rs Sangwan & SJ Ochatt. 2007. In vitro morphogenesis from cotyledon and epicotyl explants and flow cytometry distinction between landraces of Bambara groundnut [Vigna subterranea (L.) Verdc], an under-utilized grain legume. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 88: 61-75.

Lemos EEP & J Blake. 1996. Micropropagation of juvenile and mature Annona muricata L. Journal of Horticultural Science 71(3): 395-403.

Lloyd G & B McCown. 1980. Use of microculture for production and improvement of Rhododendron spp. HortScience 15: 415 (Abst. 321).

Moreira-Dias JM, RV Molina, JL Guardiola & A Garcia-Luis. 2001. Day length and photon flux density influence the growth regulator effects on morphogenesis in epicotyl segments of Toyer citrange. Scientia Horticulturae 87(4): 275-290.

Moura TL, WAB Almeida, BMJ Mendes & FAA Mourão Filho. 2001. Organogênese in vitro de Citrus em função de concentrações de BAP e secccionamento do explante. Revista Brasileira de Fruticultura 23(2): 240-245.

Nagesh KS, C Shanthamma & N Bhagyalakshmi. 2009. Role of polarity in de novo shoot shoot initiation from stem disc explants of Curculigo orchioides Gaertn. and its encapsulation and storability. Acta Physiologiae Plantarum 31: 699-740.

Papafotiou M & AN Martini. 2008. Effect of position and orientation of leaflet explants with respect to plant growth regulators on micropropagation of Zamioculcas zamiifolia Engl. (ZZ). Scientia Horticulturae 120(1): 115-120.

Pereira RCA, JEBP Pinto, SKV Bertolucci, EM Castro & FG Silva. 2006. Germinação, avaliação do ácido giberélico e posição do explante no alongamento in vitro de Uncaria guianensis (Aublet) Gmelin Rubiaceae (unha-de-gato). Ciência e Agrotecnologia 30(4): 637-642.

Rajeswari V & K Paliwal. 2008. In vitro adventitious shoot organogenesis and plant regeneration from seedling explants of Albizia odoratissima L. f. (Benth.). In Vitro Cellular Development Biology – Plant 44: 78-83.

Rasai S, AS Kantharajah & WA Dodd. 1994. The effect of growth regulators, source of explants and irradiance on in vitro regeneration of atemoya. Australian Journal of Botany 42(3): 333-340.

Rasai S, AP George &AS Kantharajah. 1995. Tissue culture of Annona spp. (cherimoya, atemoya, sugar apple and soursop): a review. Scientia Horticulturae 62(1/2): 1-14.

Santana JRF. 2003. Controle da morfogênese in vitro em algumas espécies de Annonaceae. Tese, Doutorado em Fisiologia Vegetal, Lavras: UFLA.

Santana JRF, R Paiva, PM Nicioli, EEP Lemos, MAI Aloufa. 2006. Effect of IBA and activated charcoal on rooting, growth and development of Annona glabra L. shoots. Magistra 18(3): 107-153.

Seelye JF, GK Burger & ER Morgan. 2003. Acclimatizing tissue culture plants: reducing the shock. Combined Proceedings International Plant Propagors’ Societ 53: 35-90.

Singh SK, MK Rai, P Asthana & L Sahoo. 2009. An improved micropropagation of Spilanthes acmella L. through transverse thin cell layer culture. Acta Physiologiae Plantarum 31: 693-698.

Sousa SA, ACVL Dantas,WA Souza & MMA Sousa. 2006. Atributos de qualidade de frutos de pinha requeridos no mercado atacadista de Salvador-Bahia. Magistra 18(3): 188-193.

Souza CM, JEBP Pinto, BM Rodrigues, AR Morais & MF Arrigoni-Blank. 1999. Influência dos fatores físicos na regeneração de brotos de repolho. Ciência e Agrotecnologia 23(4): 830-835.

Tiwari S & R Tuli. 2008. Factors promoting efficient in vitro refeneration from de-embryonated cotyledon explants of Arachis hypogaea L. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 92: 15-24.

Trevisan F & BMJ Mendes. 2005. Optimization of in vitro organogenesis in passion fruit (Passiflora edulis f. flavicarpa). Scientia Agricultura 62(4): 346-350.

Zimmerman RH & I Fordham. 1985. Simplified method for rooting apple cultivars in vitro. Journal of American Society for Horticultural Science 110(1): 34-38.

Zobayed SMA, F Afreen-Zobayed, C Kubota & T Kozai. 2000. Mass propagation of Eucalyptus camaldulensis in a scaled-up vessel under in vitro photoautotrophic condition. Annals of Botany 85: 587-592.

Zobayed SMA, J Armstrong & W Armstrong. 2001. Micropropagation of potato: evaluation of closed, diffusive and forced ventilation on growth and tuberization. Annals of Botany 87: 53-59.

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Publicado

2009-12-31

Como Citar

Santana, J. R. F. de, Paiva, R., Oliveira, L. M. de, Lima-Brito, A., Pereira, F. D., & Nepomuceno, C. F. (2009). Influência da polaridade do explante na resposta morfogênica de Annona squamosa L. cultivada in vitro. SITIENTIBUS Série Ciências Biológicas, 9(4), 263–268. https://doi.org/10.13102/scb8019

Edição

v. 9 n. 4 (2009)

Seção

Artigos

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